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ISH protocol 熒光原位雜交技術(shù) 實驗方案

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1、地高辛標(biāo)記寡核苷酸,熒光標(biāo)記二抗,ISH,冰凍切片操作過程:1、 多甲固定:應(yīng)盡量在半個小時內(nèi)完成。(固定時間以24-36小時為宜,避免RNA降解或固定過度。)2、 切片:為獲得高雜交信號,冰凍切片應(yīng)切成10um-20um。(選用16um)(切好的片子可以保存在-70度中)但是要注意,保存在-70度中的切片,拿出來以后,立即在4%的多甲中重新固定,避免在重新固定前切片恢復(fù)室溫。(重新固定10-15min)3、 用0.1MPB洗切片3*5min4、 切片放入100%乙醇5min,空氣中干燥。雜交液:(20ml) 藏于-20度20*SSC 4ml硫酸葡聚糖 4g去離子甲酰胺 10ml將他們?nèi)芙夂螅?/p>

2、加入以下物質(zhì):Poly A(10mg/ml) 0.5 mlSsDNA(10mg/ml) 0.5 mltRNA (10mg/ml) 0.5 mlDTT (1M) 2ml50*Denhardts 0.2ml上述溶液可以配置后長期貯藏與-20度中,用前預(yù)熱到37度。雜交溶液:將地高辛加入雜交液中,探針的濃度需要摸索(一般是100ng-1000ng/ml,一般是以200ng/ml為起點來摸索條件),所加的雜交液的體積看切片的大小來決定,對于2cm*2cm的組織,一般是加50ul,但是對于嗅球,可能30-40ul足夠。加好雜交液以后,用蓋玻片蓋上切片(注意中間不要留有任何的氣泡),為防止雜交液從蓋玻片中

3、流走,注意使切片保持水平,并且注意切片不能干燥,(干燥的話雜交會有一個很高的背景)在濕盒中37度雜交18小時,這個雜交時間可以延長到40小時來提高雜交的信號,但是前提是不能讓切片干燥。雜交后處理;制備0.5*SSC和1*SSC(從20*來稀釋)并且保證這兩種SSC在使用的時候的溫度是55度。注意配置0.5*SSC和1*SSC中含有10mM的DTT(將1.2g的DTT加入到800ml的SSC中)雜交后,用小鑷子將蓋玻片輕輕移走,然后倒掉雜交液,將切片放入洗液中,在振搖水浴 中按照下面的要求來洗片:快洗: 1*SSC(10mMDTT)室溫2*15min:1*SSC(10mMDTT)55度2*15m

4、in 0.5*SSC(10mMDTT) 55度1*10min 0.5*SSC(10mMDTT)室溫將切片一直放在最后一步的溶液中一直到下一步操作。檢測:將切片轉(zhuǎn)移到TBS緩沖液中(100mM tris-HCl,150mM NaCl,PH=7.5),將切片在TBS緩沖液中洗3*5min,封閉:(可選)將切片放在封閉液中放置30min(封閉液配方:TBS+0.1%triton X-100+1%正常綿羊血清(sigma)或者是1%的其它合適的封閉劑(Roche),將切片拿出封閉液中,用地高辛抗體和切片在TBS+0.1%triton X-100+1%正常綿羊血清(sigma)或者是1%的其它合適的封閉

5、劑(Roche)于室溫下孵育至少4小時,然后在TBS中洗3*5min ,然后在去離子水洗滌幾次以去除鹽,最后用抗淬滅劑分片觀察原位雜交要做的對照;1、 切片中mRNA的質(zhì)量(前提是新鮮的組織樣品)和protocol的有效性。 PolyT探針:如果PolyT探針雜交的信號很弱的話,說明切片的RNA已經(jīng)降解比較嚴重。2、 雜交特異性對照:檢測探針只是和RNA結(jié)合,用RNA酶處理后如果沒有雜交信號的,則說明雜交只是和RNA結(jié)合。(注意,RNA酶的處理應(yīng)該在固定以后用PBS洗兩次*5min立即進行) 用正義和反義探針來雜交,如果用正義探針雜交得不到任何的信號,則可以說明雜交的信號是特異性的雜交預(yù)處理:

6、1、 在37 恒溫箱內(nèi)干燥切片后,滴加 5-10g/ml蛋白酶K,置37 濕盒內(nèi)孵育30min, 475 酒精漂洗5min中止蛋白酶K活性。一般應(yīng)用蛋白酶K 1g/ml(于0.1 mol/L Tris,50 mmol/L EDTA,pH8.0緩沖液中),37孵育1520 min,以達到充分的蛋白消化作用而不致影響組織的形態(tài)為目的。蛋白酶K還具有消化包圍著靶DNA的蛋白質(zhì)的作用,從而提高雜交信號。甘氨酸是蛋白酶K的抑制劑,常用0.1 mol/L的甘氨酸溶液(在PBS中)清洗以終止蛋白酶K的消化作用,應(yīng)用胃蛋白酶(Pepsin)20100 g/ml(用0.1 N HCl配)37、30 min進行消

7、化,所獲實驗結(jié)果優(yōu)于蛋白酶K。為保持組織結(jié)構(gòu),通常用4%多聚甲醛再固定。2、0.25% 醋酸酐10min, 經(jīng)70 2SSC漂洗、40 2SSC各漂洗15min,2SSC 3min,切片經(jīng)75-100% 酒精梯度脫水。1. 蛋白酶K能消化和暴露被遮蔽的靶核酸,以增加探針的可結(jié)合性。蛋白酶K 濃度過低,不能使靶核酸有效暴露,濃度過高則組織消化過度,也會影響檢測結(jié)果。蛋白酶K須用蛋白酶K緩沖液配制(0.1mol/L Tris-HCl PH 8.0,50mmol/L EDTA,經(jīng)高壓滅菌后備用),蛋白酶K應(yīng)新鮮配制,低溫冰箱內(nèi)分裝保存。蛋白酶K消化組織切片是原位雜交實驗流程中重要環(huán)節(jié),蛋白酶K濃度應(yīng)

8、力求準確無誤。2. 根據(jù)組織類型、固定液的種類,固定時間和切片的厚薄的不同,蛋白酶K濃度也存在差異,選用蛋白酶K最佳消化濃度是原位雜交成功的必要條件,不可省略預(yù)雜交預(yù)雜交液;臨用前加;預(yù)雜交液不加配制:先以去離子甲酰胺與SSC于室溫混合,加入硫酸葡聚糖于50促溶,依次加入其它成份。硫酸葡聚糖在室溫常需數(shù)小時才能完全溶解。有時需旋渦振蕩。定容后充分混合。根據(jù)使用方便可分裝(最好用鋁箔將瓶子包好)存于4,可達數(shù)月。注意,雜交緩沖液在使用前切忌污染1、 將DEPC處理的切片經(jīng)ddH2O漂洗 25min2、 按組織片大小, 每張切片滴加40l雜交液,置37 溫盒內(nèi)2小時雜交1、 抖去甩干雜交溶液,用D

9、AKO魔筆沿組織周圍劃圈,滴加30l 探針雜交液/每張切片(內(nèi)含20ng地高辛標(biāo)記的探針),在某溫度下(改溫度為:TM- )濕盒內(nèi)孵育過夜雜交液內(nèi)加入變性剪切的鮭魚精子DNA在雜交前加入,與其它雜交液分開儲存。雜交液能在20保存幾個月雜交后處理1、將切片置37 2SSC中漂洗210min。 2. 在37 2SSC 漂洗215min、1SSC 漂洗215min、0.25SSC 漂洗215min,均需用振蕩漂洗切片。最適復(fù)性溫度(Optimunm renaturationtemperature, TOR):Tor =Tm 25苛刻復(fù)性溫度:Ts = Tm (10 或15)非苛刻復(fù)性溫度:Tns =

10、Tm (30 或35)在2SSC 反應(yīng)液中,可以根據(jù)下列公式計算最適復(fù)性溫度:TOr =0.51 (G+C%)+47減低背景染色背景染色的形成是諸多因素構(gòu)成的。雜交后(Posthybridization)的酶處理和雜交后的洗滌均有助于減低背景染色。在多聚甲醛固定后,浸入乙酸酐(acetic anhydride)和三乙醇胺(triethanolamine)中以減低靜電效應(yīng),減少探針對組織的非特異性背景染色。在雜交后漂洗中的RNA酶液洗滌能將組織切片中非堿基配對RNA除去。一般遵循的共同原則是鹽溶液濃度由高到低而溫度由低到高。必須注意的是漂洗的過程中,切勿使切片干燥。干燥的切片即使大量的溶液漂洗也

11、很難減少非特異性結(jié)合,從而增強了背景染色。4雜交后漂洗(1)2SSC液內(nèi)振動移除蓋片。(2)2SSC 55 10 min2。(3)05SSC 50 5 min2。(4)緩沖液(含05%封阻試劑,用緩沖液溶解)37 30 min。(5)緩沖液(100 mmol/L TrisHCl,150 mmol/L NaCl pH75)15 min,室溫。(6)酶標(biāo)地高辛抗體(15 000,應(yīng)用緩沖液解釋)37 30 min。(7)緩沖液 15 min2,室溫。(8)緩沖液(100 mmol/L TrisHCl,100 mmol/L NaCl,50 mmol/L MgCl2,pH95)室溫,2 min。(2)

12、雜交后漂洗其目的是去除未參與雜交體形成的過剩探針,消除與組織或細胞之間的非特異性結(jié)合的探針,降低背景染色,增加信/噪比。將雜交玻片從濕盒(或雜交儀)中取出,用2SSC將蓋玻片洗脫,2SSC 30洗2次,每次15 min;1SSC 42洗2次,每次15 min;05SSC 37洗2次,每次15 min,TBS緩沖液洗2次。注意在漂洗過程中切不要使切片干燥。(5)對照試驗陽性對照:用已知含靶核酸序列的組織作對照。陰性對照:用已知不含待測靶核酸序列的組織作對照。用免疫組化檢測方法來確定雜交信號的分布。省略標(biāo)記探針。DNA酶消化靶DNA對照。HJ1(6)非特異性染色非特異性染色可能會來自探針、組織內(nèi)源

13、性酶、組織細胞、顯色系統(tǒng)等;探針特異性不高以及組織細胞內(nèi)某些成分與顯示系統(tǒng)中的抗體成分非特異結(jié)合也可造成非特異性染色。組織細胞內(nèi)源性酶是原位雜交中非特異性著色的重要原因,目前最常用的酶是過氧化物酶和堿性磷酸酶,這兩種酶都廣泛存在于組織細胞中,因此用這些酶時應(yīng)有消除內(nèi)源性酶的相應(yīng)步驟。如過氧化物酶用3% H2O2處理510 min;10%冰醋酸處理組切片10 min,或在底物顯色液中加入1 mmol/L左旋咪唑可防止內(nèi)源性堿性磷酸酶的染色。NBT/BCIP顯示堿性磷酸酶時如果在光照下顯色也會增強非特異性染色。必須根據(jù)檢測系統(tǒng)不同的標(biāo)記酶作不同的內(nèi)源酶處理。2. 探針的長度原位雜交反應(yīng)中探針濃度應(yīng)

14、超過靶序列的濃度,探針濃度必須給予該實驗最大信噪比,因為背景著色度高低與探針濃度有關(guān)。最佳探針濃度是最低探針濃度達到靶核酸的最大飽和結(jié)合度為目的。探針濃度按其種類而略有不同,放射性標(biāo)記cRNA探針的濃度為0.5ng/l,而非放射性標(biāo)記cRNA探針的濃度1.0ng/l 。雜交液的量要適當(dāng),每張切片以30-50l為宜。保持雜交液不流失的關(guān)鍵是,載玻片的清潔處理必須徹底,應(yīng)用雜交罩等也很必要。3.雜交的溫度和時間設(shè)置和調(diào)整雜交溫度是RNA原位雜交的重要環(huán)節(jié)。雜交溫度應(yīng)低于解鏈或融解溫度(melting temperature Tm)20-30。多數(shù)RNA原位雜交Tm為95,由于這一溫度對保存組織形態(tài)

15、完整和組織切片的粘附將產(chǎn)生不利影響,為此在雜交液中常以增加甲酰胺濃度來降低Tm值,因為每增加1 甲酰胺濃度可降低0.72。另外雜交體中GC的百分比,雜交體長度以及雜交液中Na+的濃度也與Tm呈正相關(guān)。雜交反應(yīng)的時間可隨探針濃度的增加而縮短,雜交時間過短會造成雜交不完全,雜交時間過長會增加非特異性著色。一般RNA原位雜交采用雜交孵育過夜,在黑暗環(huán)境下進行,可以避免光線對甲酰胺的電離作用。為利于mRNA檢測,固定時間不要超過36小時,以免引起RNA與蛋白質(zhì)之間發(fā)生交聯(lián)。(三)預(yù)雜交(1)切片用DEPC處理的PBS PH7.4(140mmol/L NaCl ,2.7mmol KCl,10mmol/L

16、 Na2HPO4, 1.8mmol/L KH2PO4) 孵育25min,再用DEPC處理的含100mmol/L 苷氨酸(Glycine)PBS 孵育切片25min。(2)用DEPC處理的含0.3% Triton X-100 PBS孵育15min。(3)用DEPC處理的PBS漂洗25min。(4)冰凍切片用TE緩沖液(100mmol/L Tris-HCl ,50 mmol/L EDTA PH 8.0)不含RNA酶的1g/ml蛋白酶K,在37 下通透切片30 min。石蠟切片用TE緩沖液配制的不含RNA酶的5-20g/ml蛋白酶K,在37 下通透切片30min。(5)在4 下用DEPC處理的4 多

17、聚甲醛PBS 溶液作后固定5min。(6)再用DEPC 處理的PBS沖洗切片25min。(7)切片作酸酐處理,處理液含0.25醋酸酐、0.1mol/L 三乙醇胺(Triethanolamine TEA)PH8.0,振蕩漂洗25min。(8)在37 孵育切片后,雜交緩沖液沖洗(含50 去離子甲酰胺的4SSC),至少10 min。注意事項(1)切片的通透化是RNA原位雜交關(guān)鍵步驟,特別對回顧性資料尤為重要,因固定液種類和固定時間的不同,需作最佳通透化條件探索,包括蛋白酶K濃度,孵育時間20-30min之間調(diào)整,甚至采用0.2mol/L HCL配制的0.1 胃蛋白酶。(2)由于醋酸酐極不穩(wěn)定,宜將醋

18、酸酐在使用前加到TEA緩沖液中。(3)1SSC = 150mmol/L NaCl,15mmol/L sodium citrate pH7.2。(四)免疫熒光檢測1. 滴加封閉緩沖液(100mmol/L Tris-HCl PH7.5、150mmol/L NaCl、2% BSA) 置37 濕盒內(nèi)30min,以封閉非特異性結(jié)合部位。2. 瀝干細胞片,滴加抗地高辛抗體(1:200、1:500用封閉緩沖液配制) 在37 內(nèi)45 min。3. 用Buffer A PH7.5(100mmol/L Tris-HCl、150mmol/L NaCl、0.05% Tween 20) 沖洗漂洗各5min。4. 由低濃

19、度至高濃度(70%,90%,100%)各級酒精梯度脫水各5min。5. 空氣中干燥細胞片。6. 滴加甘油顯色混合液。注意事項甘油顯色混合液的配制:9份甘油比1份(1mol/L Tris-HCl(PH7.5), 2% 1.4-diaza-bicyclo-2.2.2-octane (DABCO)和DNA復(fù)染劑(或碘化丙啶Propidium iodide PI 500ng/ml)或 DAPI (75ng/ml)7. 在熒光顯微鏡下觀察。3 預(yù)雜交和雜交(1)加約30 l預(yù)雜交液在每張載片上,室溫孵育1 h。如加鯡魚精子DNA,用前須在沸水浴中加熱變性10 min,酵母tRNA不用加熱。(2)預(yù)雜交后

20、以2SSC漂洗,以吸水紙試干切片周圍水份,應(yīng)用預(yù)雜交液稀釋地高辛標(biāo)記的Oligo探針,濃度根據(jù)于待測核苷酸含量和實踐的結(jié)果。如對于檢測大鼠垂體的前促黑激素(proopiomelanocortin,POMC)mRNA的Oligo探針,其理想工作濃度為342 ng/ml(0 342 ng/l)。(3)加30 l雜交液在切片上,加硅化蓋玻片,在37過夜。如探針大于36堿基則雜交溫度為42。(4)次日室溫2SSC液漂洗切片1 h。(5)1SSC漂洗切片1 h(室溫)。(6)05SSC 37漂洗半小時。(7)05SSC室溫漂洗半小時。(8)顯示等方法同前述。Application Dilution Co

21、nc. g/ _lSufficient for.in situ hybridization1:5001:1000 0:20:42Denhardts液通常配成10,50或100的儲備液配制:稱取上述試劑,溶于800ml左右滅菌ddH2O中,定容至1000ml后,過濾后于-20保存?zhèn)溆谩T撘河糜谂渲齐s交液及予雜交液等。1蛋白酶(Proteinawe K, Pro.K) 蛋白酶K主要用于雜交前標(biāo)本處理,其作用是使組織達到一定消化,利于檢測分子的穿透,從而提高檢測方法的敏感性,但各種組織在不同條件下消化程度不一,因此,具體應(yīng)用時,應(yīng)根據(jù)組織種類、溫度確定反應(yīng)時間及酶的濃度。過度消化可使組織形態(tài)結(jié)構(gòu)遭到

22、明顯破壞,核酸分子也會受到影響。通常是將其配成儲備液(1mg/ml),臨用前,再配成工作液(約0.025mg/ml)。配制方法:精心稱藥,將二者充分混合后,分裝成小份,-20存放,用時再取出凍融,余者棄去。(2)工作液(臨用前配):取儲備液(1mg/ml)按1:40稀釋,充分混合,即得約含Pro.K為25mg/ml的工作液。(3)關(guān)于P-K緩沖液的配制:稱取上述試劑,充分混合即可。1mol/L 的Tris-HCl(pH8.0):先將Tris于800ml ddH2O中溶解,用HCl將pH調(diào)至8.0,ddH2O定溶于1000ml,高壓滅菌,室溫備用即可。0.5mol/L的EDTA:稱取EDTA溶于

23、約600ml ddH2O中,常需60持續(xù)攪拌以助溶,滴加NaOH至pH接近8.0時,EDTA才開始溶解。待完全溶解后,冷卻至室溫,NaOH調(diào)pH至8.0,ddH2O定溶至1000ml,高壓滅菌,室溫備用。2甘氨酸(1)1mol/L甘氨酸:稱取甘氨酸75g溶于ddH2O或DEPC水中,最后補足ddH2O定容至1000ml,高壓滅菌備用。該液為儲備液,-20儲存。(2)甘氨酸工作液(0.1mol/L):將二者按1:10比例稀釋,即得甘氨酸工作液。一般要求臨用前新鮮配制。甘氨酸有終止蛋白酶K作用的作用,以防過度消化。30.25%醋酸-0.25%醋酸酐配制:按上述配方,先以少許DEPC水溶解NaCl,

24、然后加入三乙醇胺及濃HCl。DEPC水定容至約1000ml(997.5ml),臨用前,一邊搖動溶液一邊加入醋酸酐,充分混合。注意操作時避免濃HCl 濺出,最好在通風(fēng)條件下進行。生物體內(nèi)有些組織,如神經(jīng)組織中的蛋白質(zhì),對帶負電荷的核酸探針較易吸附。經(jīng)該液乙?;幚砗?,可使切片標(biāo)本表現(xiàn)帶上負電荷,有排斥帶負電的核酸探針,減少非特異吸附,降低反應(yīng)背景的作用。4RNA酶溶液取RNA酶A溶解于100ml DEPC水中,分裝成小份(1ml,10mg/ml),-20儲存。臨用前,取RNA酶A儲備液,用2SSC溶解配成工作液(0.01mg/ml).5.0.2%取2ml Triton X-100加入998ml PBS中,充分振蕩使其充分混合。八、雜交后漂洗溶液無論用何種標(biāo)記方法及何種信號顯示方法,在雜交后洗脫則是大同小異。在此,歸納幾種帶有共同性及常用的洗脫液。該液常用于雜交后的初次洗脫,故離子強度(張力)較高。該液常用于雜交后的第二次洗脫,離子強度較低,經(jīng)過上述兩套洗脫液洗后,有的還可用2SSC,10%(0.1%)SDS洗脫。主要是洗去殘留的RNA,降低背景。用于以RNA為探針的原位雜交方法中。4Dig標(biāo)記探針雜交后處理液用ddH2O溶液并定容至1000ml。用ddH2O溶解并定容至1000ml。配制同上。

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